РОССИЙСКАЯ АКАДЕМИЯ НАУК
Институт Биоорганической Химии им. М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова
На правах рукописи
БУЗДИН АНТОН АЛЕКСАНДРОВИЧ
Полногеномное сравнение распределения ретроэлементов в ДНК человека и шимпанзе
03.00.03 - Молекулярная биология
ДИССЕРТАЦИЯ
на соискание учёной степени
кандидата биологических наук
Научный руководитель:
Старший научный сотрудник ИБХ РАН, кандидат биологических наук
Лебедев Ю. Б.
Москва - 2002
Оглавление.
Список использованных сокращений 7
Введение 8
Обзор Литературы
Часть 1. Разнообразие мобильных элементов
Глава 1.1. Краткая характеристика и классификация мобильных элементов 9
Глава 1.2. ДНК-транспозоны,
или мобильные элементы класса II 10
IS элементы прокариот 11
Собственно ДНК транспозоны 12
Семейство Ас1/Hobo 12
Семейство Тс1/Mariner 13
Глава 1.3. Общая характеристика ретроэлементов 15
Глава 1.4. Не содержащие LTR ретроэлементы. Ретроинтроны
(интроны группы II) 19
Глава 1.5. Не содержащие LTR ретроэлементы. Группа LINE 22
Группа CRE 33
Группа NeSL-1 34
Группа R2 34
Группа R4 35
Группа L1 35
Группа Tad1 43
Группа LOA 43
Группа R1 43
Группа CR1 44
Группа Jockey 45
Группа RTE 47
Группа I 48
Глава 1.6. Не содержащие LTR ретроэлементы.
Ретропозоны (SINE и процессированные псевдогены) 49
7SL РНК-подобные SINE 52
тРНК-подобные SINE 57
SINE-R 62
Процессированные псевдогены 64
Глава 1.7. LTR-содержащие ретроэлементы: LTR-
ретротранспозоны и эндогенные ретровирусы 67
LTR-ретротранспозоны 72
Семейство Ty1/copia 77
Семейство Ty3/gypsy 79
Семейство BEL 81
Группа MaLR 81
Эндогенные ретровирусы 82
Классификация ретровирусов 89
Эндогенные ретровирусы группы I
HERV-L 92
HERV-S 93
Эндогенные ретровирусы группы II
HERV-H 93
HERV-F 94
IAP 94
HERV-K 94
Эндогенные ретровирусы группы III
HERV-E 98
HERV-I 98
HERV-IP-T47D 98
HERV-ADP 99
HERV-P 99
HERV-HS49C23 99
HERV-R 100
HERV-Z69907 100
ERV-9 101
HERV-FRD 101
HERV-S71 101
Химерные семейства эндогенных ретровирусов
HERV-W 102
HERV-E.PTN 103
Ретровирусы и геном человека 103
Глава 1.8. Некоторые аспекты происхождения и эволюции
Ретроэлементов 110
Эволюция автономных ретроэлементов 110
Эволюция неавтономных ретроэлементов 115
Глава 1.9. Функции ретроэлементов в клетке и их влияние на
геном хозяина: факты и гипотезы 117
Часть 2. Техника вычитающей гибридизации: эффективный подход к решению задач молекулярной генетики
Глава 2.1. Появление метода
Вычитающей Гибридизации (ВГ) 124
Глава 2.2. Применение ПЦР для усовершенствования ВГ 129
Глава 2.3. Появление метода Репрезентативного Дифференциального Анализа (RDA) 132
Глава 2.4. Метод Супрессионной Вычитающей Гибридизации (SSH) 136
Глава 2.5. Дальнейшие перспективы развития техники ВГ 143
Экспериментальная часть работы
Часть 3. Разработка метода TGDA и применение его для поиска специфичных для генома человека внедрений ретроэлементов
Глава 3.1. Актуальность метода 145
Глава 3.2. TGDA: экспериментальная техника, позволяющая
проводить полногеномное сравнение распределения мобильных
элементов между организмами без предварительного знания
первичной структуры их геномов 148
Принцип метода 148
Глава 3.3. Полногеномная идентификация интеграций HERV-K (HML-2), специфичных для генома человека. 153
Применение TGDA для поиска интеграций LTR HERV-K
(HML-2), специфичных для ДНК человека 153
Структурный анализ известных чс LTR 157
Анализ генного окружения LTR семейства HS 161
Разделение семейства HS на два подсемейства 162
Эволюционная история семейства HS 163
Анализ чс LTR HERV-K (HML-2), картированных в
интронах генов 164
Глава 3.4. Применение TGDA для поиска чс внедрений L1 169
Глава 3.5. Химерное семейство ретроэлементов U6-L1 175
Химерное семейство U6-L1 175
Другие химерные семейства ретротранскриптов 180
Глава 3.6. Заключение 185
Обсуждение возможностей метода TGDA и спектра его
применимости 185
Выводы 186
Материалы и методы
4.1. Образцы геномных ДНК 187
4.2. Олигонуклеотиды 187
4.3. Приготовление ДНК Трейсера и Драйвера 187
4.4. Вычитающая гибридизация 188
4.5. Создание библиотек и дифференциальный скрининг
фланков LTR 188
4.6. Определение первичной структуры клонов 189
4.7. Анализ последовательностей ДНК 189
4.8. ПЦР-анализ 190
4.9. Гибридизация с зондами на последовательности U6 мяРНК
и L1 190
4.10. Образцы кДНК тканей человека 190
Приложение 1. Структура уникальных геномных праймеров, использованных для амплификации локусов, содержащих интеграции LTR
191
Приложение 2. Структура уникальных геномных праймеров, использованных для амплификации локусов, содержащих интеграции L1
193
Приложение 3. Структура уникальных геномных праймеров, использованных для амплификации локусов, содержащих отобранные для анализа интеграции LTR HERV-K(HML-2), принадлежащих семейству HS
194
Список литературных источников 196
Благодарности 228
Список использованных сокращений
ВГ - Вычитающая Гибридизация
мяРНК - Малая Ядерная РНК
ПЦР - Полимеразная Цепная Реакция
п.н. - пары нуклеотидов
т.п.н. - тысяч пар нуклеотидов
чс - специфичный для генома человека
EN - эндонуклеаза, или эндонуклеазный домен; от англ. EndoNuclease
ERV - эндогенный ретровирус, от англ. Endogenous RetroVirus
HERV - эндогенный ретровирус человека, от англ. Human Endogenous RetroVirus
LINE - название таксона автономных LTR- несодержащих ретроэлементов, от англ. Long Interspersed Nuclear Element
LTR - длинный концевой повтор, от англ. Long Terminal Repeat
ORF - открытая рамка считывания, от англ. Open Reading Frame
PBS - участок посадки праймеров, от англ. Primer Binding Site
RT - обратная транскриптаза, или домен обратной транскриптазы, в зависимости от контекста; от англ. Reverse Transcriptase
SINE - название таксона неавтономных LTR- несодержащих ретроэлементов, от англ. Short Interspersed Nuclear Element
TE - мобильные элементы, от англ. Transposable Element
TGDA - метод полногеномного сравнения интеграций мобильных элементов между ДНК родственных видов, от англ. Targeted Genomic Differences Analysis
VLP - вирусоподобные частицы, от англ. Virus Like Particles
Введение.
Чем дальше продвигается наука в постижении механизмов и назначения обратного потока генетической информации, тем больше вопросов встаёт перед исследователями. Обнаружение в геномах живых организмов всё новых и новых мобильных элементов постоянно заставляет пересматривать или корректировать многие воззрения на эволюцию и функционирование генетического аппарата клетки. Успехи в технологиях клонирования и секвенирования протяжённых последовательностей ДНК выводят молекулярную генетику на новый, доселе невиданный, уровень – уровень исследования целых геномов. Вместе с тем понятно, что (i), хотя количество определённых полногеномных последовательностей ДНК различных организмов и возрастает год от года, далеко не для всех видов живых организмов эти последовательности будут установлены в обозримом будущем. К тому же (ii), при осуществлении любого такого масштабного геномного проекта оперируют лишь небольшой выборкой геномов представителей изучаемого вида и большинство полиморфных для данного вида аллелей при этом ускользают от анализа. В связи со сказанным выше чётко встаёт проблема создания новых техник, позволяющих проводить полногеномное сравнение ДНК различных видов организмов или особей одного вида без масштабного секвенирования. Данная работа была посвящена созданию такого метода, позволяющего проводить сравнение распределения повторяющихся элементов между организмами на уровне целых геномов. Метод был применён для поиска внедрений мобильных элементов, специфичных для генома человека.
Обзор литературы.
Часть I. Разнообразие мобильных элементов.
Глава 1.1. Краткая характеристика и классификация мобильных элементов.
Мобильные элементы, или транспозоны (англ. Transposable Elements – TE) – это фрагменты ДНК, способные каким-либо способом размножаться и перемещаться в геноме. Первые TE около 50 лет назад были описаны в геноме кукурузы Барбарой МакКлинток [1]. С тех пор мобильные элементы были обнаружены в геномах практически всех организмов. Они являются одним из основных компонентов геномов эукариот. Например, TE составляют более 50% генома кукурузы (Zea mays) [2, 3], 10-15% генома Drosophila [3] и 42% генома человека [4]. При этом разные группы транспозонов представлены различным количеством копий на гаплоидный геном – от единиц и до миллионов [2-19].
В связи с огромной представленностью в геномах эукариот, TE рассматриваются как один из основных факторов эволюции эукариотических геномов [2, 3, 6, 9, 10, 15, 20-22]. Их интеграции в различные участки геномной ДНК могли придавать организму либо определённые преимущества по отношению к другим, либо же, наоборот, могли снижать жизненный статус организма и приводить к его гибели. Показано, что внедрения транспозонов могут изменять регуляторные участки генов, вызывать хромосомные перестройки и изменения структуры хроматина, могут даже участвовать в процессе удлинения теломер, а также в репарации ДНК [2, 3, 5-7, 9-12, 20-24].
Абсолютно все TE зависят от функционирования клетки-хозяина и, следовательно, “заинтересованы” в поддержании ее жизнедеятельности. Ко-эволюция и ко-адаптация ТЕ и генома клетки, в который они интегрировали, играют важную роль в поддержании активности мобильных элементов.
ТЕ различаются по своей структуре и по типу транспозиции. Выделяют 2 основных класса ТЕ – I и II [2-6, 9, 11]. Класс I представляет собой ретроэлементы – мобильные элементы, размножающиеся посредством РНК-копий своего генома. Для транспозиции они используют фермент РНК-зависимую ДНК-полимеразу (альтернативные названия этого фермента: обратная транскриптаза (reverse transcriptase – RT), ревертаза), которая осуществляет синтез ДНК на матрице РНК. Класс II ТЕ включает в себя элементы, которые перемещаются непосредственно с помощью своих ДНК-копий (так называемые ДНК-транспозоны). Их транспозиция осуществляется путем вырезания и реинтеграции в новое место генома. При этом иногда происходит размножение таких мобильных элементов: исходный экземпляр остается в прежнем сайте, а копия встраивается в новый район ДНК. Дупликация элемента может также происходить при перемещении транспозона из реплицированной в еще не реплицированную часть генома или же при генной конверсии. Для транспозиции элементы класса II используют фермент транспозазу.
Первая часть настоящего обзора посвящена рассмотрению общих структурных свойств, эволюции и функциональной активности ТЕ. Наиболее пристальное внимание будет уделено ретроэлементам, поскольку именно представители этого класса транспозонов были активны в предковой линии человека и остаются активными в геноме Homo sapiens и поныне.
Глава 1.2. ДНК-транспозоны, или мобильные элементы класса II.
Мобильные элементы данного класса имеют инвертированные концевые повторы – TIR, от англ. tandem inverted repeats – длиной от 10 до 500 п.н. и подразделяются на две группы: автономные и неавтономные ДНК-транспозоны [2, 3, 5, 11, 14]. Автономные элементы кодируют транспозазу, которая специфически связывается с TIR и катализирует вырезание и интеграцию мобильного элемента, т.е. транспозицию. Неавтономные элементы используют транспозазу других ТЕ для своего перемещения по геному. Интеграция в геном приводит к образованию фланкирующих элемент коротких прямых повторов (англ. direct repeats - DR). Длина DR обычно cоставляет 2-8 п.н. [25-27]. Классификация ДНК транспозонов построена на основе сходства их TIR и последовательностей транспозаз. Наиболее простой структурой обладают так называемые IS (от англ. insertion sequence) элементы прокариот, которые образуют отдельный подкласс ДНК-транспозонов [24, 27].
IS прокариот – это небольшие фрагменты ДНК (длиной обычно менее 2,5 т.п.н.), которые характеризуются несложной структурой. Схематическое изображение типичного IS элемента представлено на Рис.2. Довольно сложно определить границы этого подкласса TE, поэтому некоторые IS, например IS101 и IS1071 [27], иногда относят к собственно ДНК транспозонам. На концах IS содержат инвертированные повторы в 8-40 п.н., причем обычно правый и левый повторы не полностью идентичны друг другу (для IS1, например, гомологичны 18 из 23 п.н.). Как правило IS содержат только одну открытую рамку считывания (англ. open reading frame - ORF), кодирующую белок транспозазу, необходимый для перемещения IS по геному. В процессе интеграции IS в геном происходит дупликация сайта ДНК-мишени, вследствие чего IS содержат на концах прямые повторы от 2 до 12 п.н. Некоторые IS элементы могут формировать собой концы других, более высокоорганизованных прокариотических транспозонов. Так, например, концы Tn10 представляют собой два противоположно ориентированных IS10, а концы Tn5 – два IS50 [27]. Заканчивая описание IS элементов, необходимо упомянуть, что именно ими опосредовано взаимодействие между F-фактором и бактериальной хромосомой.
Собственно ДНК транспозоны содержатся в геномах как прокариот, так и эукариот (например, в среднем около 1,5% генома эукариот составляют ДНК транспозоны [4, 5, 11]). Эти элементы обычно содержат короткие инвертированные повторы, хотя некоторые представители этой группы их не имеют (например, бактериофаг Mu) [28]. В отличие от IS, ДНК транспозоны прокариот являются более сложно организованными мобильными элементами, которые, в большинстве случаев, кодируют не только транспозазу, но и другие белки, содействующие их распространению по геному. Как уже было сказано, ДНК транспозоны разделяются на автономные и неавтономные элементы. Мобильность ДНК транспозонов обеспечивается инвертированными повторами, которые опознаются транспозазой в процессе вырезания этих мобильных элементов из геномной ДНК [25, 26]. Неавтономные элементы не кодируют собственной транспозазы, но содержат TIR, гомологичные инвертированным повторам автономных элементов, и всегда используют “чужую” транспозазу для своего перемещения по геному [25, 29, 30]. Одним из примеров неавтономного ДНК-транспозона является элемент Ds из Zea mays, который использует транспозазу элемента Ас, т.к. последние 11 п.н. в последовательности инвертированных повторов у него такие же как и у Ac [25]. Механизм транспозиции ДНК транспозонов представлен на Рис.3. Согласно классификации, построенной на сходстве транспозаз, ДНК-транспозоны подразделяют на два семейства: Ac/hobo и Tc1/mariner [11, 25, 26, 31].
Семейство Ac/hobo включает в себя транспозоны различной длины – от 3 до 8 т.п.н., кодирующие, как правило, не только транспозазу, но и различные вспомогательные белки (например, вспомогательный ДНК-связывающий белок). Представители данного семейства имеют похожие TIR длиной 12-15 п.н. [14]. Полноразмерные активные представители семейства обнаружены в геномах многих растений, а также животных – от беспозвоночных до Xenopus laevis. Элементы семейства Ac/hobo, содержащие большие внутренние делеции, обнаружены и у других эукариот – элемент Tourist в геноме Zea mays [2], элемент Pony в ДНК Aedes aegypti [32], элемент Emigrant в геноме Arabidopsis thaliana [33] и др. [5, 34, 35]. В геноме человека также присутствуют такие элементы, длиной от 150 до 500 п.н. Их относят к группе MER1 (medium reiterated frequency repeats), количество их составляет около 105 на гаплоидный геном. Все вышеописанные содержащие делеции транспозоны Ac/hobo являются дефектными автономными транспозонами. Есть среди представителей Ac/hobo и неавтономные элементы, например элемент Sol3 или упоминавшийся уже элемент Ds. В заключение необходимо упомянуть о том, что в геноме человека найдены и полноразмерные транспозоны семейства Ac/hobo – элементы Charlie1-8, Cheshire, Zaphnod и MER69, которые кодируют транспозазу гомологичную транспозазам hobo, Ac/Ds и Tam [5, 14]. Однако же рамки считывания этих транспозонов человека прерваны большим количеством мутаций. Вообще, по всей видимости, геномы всех млекопитающих не содержат активных ДНК-транспозонов.
Второе семейство ДНК-транспозонов, Tc1/mariner, характеризуется инвертированными повторами длиной 23-30 п.н. и сайтом ДНК-мишени ТА [13, 26, 30]. Представители Tc1/mariner кодируют либо единственный белок – транспозазу, либо имеют одну дополнительную рамку считывания (например, элемент pogo). Семейство Tc1/mariner в большинстве своем, как и семейство Ac/hobo, представлено дефектными ТЕ. Длина таких элементов обычно составляет 100-2500 п.н. В геноме человека это группа MER2, у представителей которой делетирована большая часть внутренней последовательности. В геноме человека найдены и полноразмерные представители MER2 – Tigger1 и Tigger2. Размер Tigger1 и Tigger2 составляет примерно 2,4 и 2,7 т.п.н., соответственно, а размер элементов с внутренней делецией (подавляющее большинство представителей группы MER2) – от 200 до 1200 п.н. [5, 34, 36].
ДНК транспозон mariner (его размер приблизительно 1300 п.н.) изначально обнаружили в насекомых – Drosophila, Carpelimus, Mellifera и др. Он кодирует единственный белок – транспозазу. В последнее время mariner-подобные копии выявили и в геномах некоторых млекопитающих, например в ДНК человека и овцы [11, 14, 36, 37]. Не исключено, что mariner представлен и в геномах других организмов.
В настоящее время многие исследователи рассматривают ДНК-транспозоны как один из важных факторов эволюции организмов. В ходе эволюции вставки транспозонов могли изменять транскрипцию близлежащих генов или процессинг их транскриптов, участвовать в выключении генов, способствовать перемещению больших участков ДНК (с помощью альтернативной транспозиции или гомологичной рекомбинации) [2, 3, 22, 24]. Возможно, что происхождением антиген-специфичного иммунитета позвоночные обязаны именно ДНК транспозонам. Рекомбинационная система VDJ обладает двумя основными признаками ДНК транспозонов: рекомбиназой (кодируемой генами RAG1 и RAG2) и мобильной ДНК, ограниченной специфическими сайтами, которые узнает рекомбиназа. Кроме того, RAG белки гомологичны транспозазе элемента Тс1 [5]. Кроме того, основной связывающий центромеры белок млекопитающих СENP-B гомологичен транспозазе pogo [14]. Также показано наличие фрагментов последовательностей различных ДНК-транспозонов в экзонах некоторых клеточных мРНК – например, для мРНК генов eIF4G2 и p52rlPK [5].
Глава 1.3. Общая характеристика ретроэлементов.
Термин “ретроэлементы” относится к обширному классу последовательностей нуклеиновых кислот, появление и/или поддержание которых в клеточном геноме так или иначе связано с процессом переноса генетической информации от РНК к ДНК, называемым обратной транскрипцией. Возможность этого явления, показанная ещё в 60-е годы советским генетиком С.М.Гершензоном в опытах с вирусом полиэдроза насекомых [38], впервые была чётко продемонстрирована в 1970 г. в работах Г.Тёмина и Д.Балтимора.
Этим авторам удалось выделить и охарактеризовать фермент РНК-зависимую ДНК-полимеразу, или ревертазу, способную катализировать синтез ДНК-копии (кДНК) на РНК-матрице [39, 40]. С тех пор последовательности, кодирующие гомологичные обратной транскриптазе белки, были обнаружены в составе самых разных генетических элементов. Кроме ретровирусов, с которыми работали Тёмин и Балтимор, и ряда других представителей вирусного царства (гепаднавирусы, каулимовирусы), в эту группу оказались включены несколько типов мобильных элементов эукариот, интроны группы II из митохондрий дрожжей, бактериальные ретроны и некоторые плазмиды. Ретроэлементы можно разделить на два класса: (1) те, которые для для размножения используют собственные белки, или ретротранспозоны, и (2) те, которые не кодируют собственных белков и перемещаются по геному при помощи ферментного аппарата ретроэлементов класса (1), или ретропозоны [41] – такая классификация аналогична разбиению ДНК-транспозонов на автономные и неавтономные.
Разными исследователями неоднократно предпринимались попытки создать классификацию всех известных ретроэлементов класса (1) на основе эволюционного родства закодированных в них ревертаз [42-44]. Авторам наиболее полной из них [43] не только удалось показать общность происхождения обратных транскриптаз, взятых из разных источников, но и обосновать гипотезу, согласно которой возможными предками всех ретроэлементов следует считать предшественников современных вирусов с (+)РНК-геномом, поскольку именно РНК-зависимая РНК-полимераза этих вирусов наиболее близка по своей первичной структуре к ревертазе.
Все эти спекуляции, тем не менее, касаются лишь происхождения и эволюции гена обратной транскриптазы, в то время как многие ретроэлементы имеют рамки считывания и для других белков, причём филогенетические деревья, построенные на основе сравнения их последовательностей, могут не совпадать с таковыми для ревертаз [44]. В данной работе автор будет придерживаться традиционной классификации, приведённой ниже, которая построена на основе морфофункциональных признаков. К рассмотрению же филогении гена обратной транскриптазы мы ещё на раз будем возвращаться по ходу изложения материала.
Как было сказано выше, к первому (1) классу ретроэлементов относятся ретротранспозоны, обладающие собственным геном ревертазы. Их подразделяют на элементы, содержащие и не содержащие длинные концевые повторы (англ. long terminal repeats, LTR) – последовательности длиной 100-1800 п.н., фланкирующие “тело” ретроэлемента в геномной ДНК. LTR-содержащие ретротранспозоны и ретровирусы имеют также несколько открытых рамок считывания – gag, pol и env [19, 41]. LTR-ретротранспозоны, в отличие от ретровирусов, не имеют гена env [5, 17, 41]. Не содержащие LTR элементы как правило относят к LINE (англ. long interspersed nuclear element). Размер LINE составляет 3,5-8 т.п.н. В геноме LINE содержится ген ревертазы и, иногда, другие гены, кодирующие белки, необходимые для эффективного размножения ретроэлементов. На 3’-конце LINE содержат поли (А) участок, который, вероятно, играет важную роль в процессе их интеграции в новые локусы геномной ДНК.
Ретроэлементы класса (2), не содержащие гена ревертазы, представляют собой либо SINE (англ. short interspersed nuclear elements), либо процессированные псевдогены. SINE – это последовательности длиной 50-700 п.н., как правило обладающие внутренним промотором РНК-полимеразы III. На 3’-конце они, как правило, имеют поли (А) последовательность. К SINE относятся Alu, В1, MIR и многие другие ретроэлементы [15, 41].
Таким образом, ретроэлементы подразделяются на 3 основных систематических группы: LTR-содержащие, LINE и SINE. Также в состав мобильных ретроэлементов включают ещё одну, стоящую особняком, группу: ретроинтроны (мобильные интроны группы II). Каждая из названных групп ретроэлементов будет описана далее в соответствующих главах настоящего обзора.
Основная гипотеза происхождения ретроэлементов была предложена Теминым [45]. Она заключается в следующем: ретроэлементы могли эволюционировать вместе с геном обратной транскриптазы, т.е. происходила последовательная специализация РНК-зависимой ДНК-полимеразы. Предполагаемый путь эволюции шёл от гена обратной транскриптазы, через LTR-несодержащие ретротранспозоны, к LTR-содержащим ретротранспозонам и ретровирусам. Анализ структуры различных классов ретроэлементов, представленных в геномах эукариот, показывает постепенное приобретение предшественниками эндогенных ретровирусов (ERV, англ. endogenous retrovirus) дополнительных ферментативных активностей – РНКазы Н, интегразы (IN), протеазы (PR), а также некоторых регуляторных белков. Одновременно происходила успешная ассоциации этого предшественника с последовательностями, влияющими на его регуляторный потенциал (такими как LTR). Есть некоторые подтверждения этой гипотезы. Филогенетический анализ последовательностей гена обратной транскриптазы показал, что ретроинтроны и LINE (ретротранспозоны, не содержащие LTR) являются более древней формой, чем ретровирусы [41].
Механизм ретропозиции ретроинтронов и LINE также значительно проще, чем у LTR-ретротранспозонов и ретровирусов. Возможно, фермент теломераза, который имеет активность ДНК-зависимой РНК-полимеразы, является наименее дивергировавшим потомком того самого гена обратной транскриптазы, от которого произошли ретроэлементы (хотя не исключено и обратное) [46].
По всей видимости, каждая отдельная группа ретроэлементов произошла от одного предка – так называемого “мастер гена”, с которого начинается история любой группы ретроэлементов. Это можно проиллюстрировать на любезно предоставленном эволюцией примере ID элементов крыс, для которых сохранился все еще активный “мастер ген” [47]. На определенном этапе эволюции, одна из копий тРНК аланина интегрировала в геномную ДНК клетки. Затем, в результате некоторого количества мутаций, эта копия тРНК приобрела внутренний промотор, достаточный для инициации транскрипции РНК-полимеразой III и, таким образом, превратился в BC1, которая, посредством своих РНК-копий, распространилась по геному с помощью ретропозиции. Сейчас ее копии распределены по всему геному крыс – они называются ID элементы. Таким образом, BC1 РНК и является “мастер геном” для ID.
Трудно переоценить влияние ретроэлементов на эволюцию геномов эукариот, а, стало быть, и на эволюцию эукариот в целом. Ретроэлементы могут вызывать различные перестройки геномной ДНК (делеции, инверсии, транслокации, дупликации), влиять на регуляцию экспрессии генов (на различных уровнях - от транскрипции до трансляции), а также участвовать в появлении новых генов (см. обзоры: [3, 15, 19, 20, 41, 47, 48]). Подробнее воздействие ретроэлементов на различные клеточные процессы и на организм рассматривается в Главах 1.4-1.7, а также отдельно в Главе 1.9.
Глава 1.4. Не содержащие LTR ретроэлементы. Ретроинтроны (интроны группы II).
Поскольку, как это было изложено в предыдущей главе, наиболее древней группой ретроэлементов являются LTR-несодержащие, а LTR-содержащие ретротранспозоны, и, особенно, ретровирусы, являются своеобразным венцом эволюции ретроэлементов, то, из уважения к возрасту LTR-несодержащих элементов, автор считает нужным именно с них начать подробное описание отдельных групп ретроэлементов.
Cтарейшей среди LTR-несодержащих ретротранспозонов считают группу ретроинтронов, или интронов группы II. До недавнего времени считалось, что наличие ретроэлементов свойственно лишь геному эукариот. Теперь ясно, что это не так.
Интроны группы II – это один из двух классов самосплайсирующихся интронов, которые находятся в геномах прокариот или органелл эукариот [49, 50]. Вероятно, первые мобильные интроны группы II появились в геноме бактерий. В процессе образования эукариотической клетки, ретроинтроны проникли в неё, находясь в геноме бактерий – предков современных митохондрий и пластид [49].
В геноме интронов группы II содержится одна открытая рамка считывания (ORF), которая кодирует белок, содержащий 3 домена: домен обратной транскриптазы (RT), домен эндонуклеазы (Zn домен) и домен, функция которого пока не установлена (X домен). Домен RT осуществляет обратную транскрипцию РНК, содержащих интрон(ы) группы II (хотя в принципе может использовать в качестве матрицы и другие клеточные РНК).
Транскрипция ретроинтрона начинается с промотора гена, в котором находится внедрение этого элемента (Рис.1.4.1). РНК ретроинтронов обладает рибозимной активностью, в результате которой осуществляется самосплайсинг РНК интронов группы II из пре-мРНК содержащих их генов. Сплайсированная РНК ретроинтрона транслируется, в результате чего образуется химерный белок, небольшой
